SDS-PAGE
1. 정의 및 원리

SDS는 Sodium Dodecyl Sulfate의 약어로 음이온 계면활성제의 일종이다. SDS는 단백질의 가용화제로 이용되고 있으며, 단백질의 전기영동에 SDS-PAGE가 가장 일반적인 방법으로 사용되고 있다. PAGE는 Polyacrylamide gel electrophoresis의 약자이다.

단백질은 구성하는 아미노산에 의해서 +,- 관계없이 어떤 전하를 띄는데, SDS가 결합함으로써 일시적으로 -하전을나타내면서 모든 분자를 양극으로 이동시키게 된다. GEL의 PORE사이즈에 의해서 이동속도 차를 이용하게 되며, 분자량의 크기에 따라 단백질을 분리할 수 있다. 이때 sample buffer에 DTT나 MERCAPTOETHANOL이 첨가되어 있어서 disulfide bond도 끊어지게 되면서 단백질은 일차 구조를 형성하게 된다. 전극을 가해주어 +쪽으로 이동시키며 분자량 별로 분리한다.

2. SDS 역할

SDS는 amphipathic의 특성을 가지는 대표적인 detergent이다. 단백질과 가장 강력한 결합력을 보인다. 일반적으로 단백질을 구성하는 아미노산 2개에 sds 1개가 결합되게 되면서 단백질은 고유 전하를 잃어버리고 sds에 의해 -전하를 나타내게 된다. SDS의 작용으로 denatured된 단백질들은 막대기처럼 펼쳐진 상태로 아크릴아마이드가 이루는 그물구조를 통과한다. 그래서 크기가 큰 단백질일 수록 길이가 길어서 그물을 빠져나오는데 시간이 걸리게 되고, 그로인해 이동속도가 느려지게 되면서 단백질이 분리가 되는 것이다.

3. gel의 구성

폴리아크릴아마이드가 이루는 그물구조인데, pH를 다르게 하면서 stacking 과 running GEl로 되어있다. running gel의 acrylamide 농도에 따라 Gel 그물구조 크기가 달라지면 이를 이용하면서 단백질 이동속도를 조절할 수 있다.

1) stacking gel
pH6.8
stacking 이란 단백질을 겔에 로딩할 때, 출발점이 다른 단백질 샘플을 최대한 가깝게 다져준다.
쉽게 말해 단백질들이 출발선 상에 오도록 일자로 정렬하게 만들어주는 역할이다. 

sample buffer로 -로 변성시킨 단백질을 gel 에 로딩하면 buffer안에 있던 glycine이온은 net charge가 0이 되는 pI값이 6.2이다. gel은 6.8이므로 이 차이에 의해 cl-가 가장 빨리 내려가게 되고 glycine은 느리게 내려가게 된다. 이동속도는 cl-단백질-glycine이 되고 cl-와 glycine사이의 high voltage gradient가 생기게 되어 두 이온사이의 단백질들 이동속도가 차이가 낮아지고, 일직선으로 내려가게된다. 출발선상에 같게 위치하게 된다. 


2) running gel (seperation gel)
pH 8.8
stacking gel에서 다져진 단백질을 분자량 사이즈에 따라 분리한다.
glycine이 완전히 이온화되고 cl-glycine-단백질로 이동속도가 달라지면서 gradient 형성되었던것이 거의 없어지게 된다. 단백질은 분자량에 따라 분리가 된다.

SDS-PAGE

SDS PAGE principles - simple animated tutorial

출처: https://m.blog.naver.com/PostView.nhn?blogId=qpting&logNo=220819827153&proxyReferer=https%3A%2F%2Fwww.google.co.kr%2F


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ASO검사

ASO 검사는 그 중에서도 특히 중요한 A군 용혈성연쇄상구균이라는 세균의 감염으로 생기는 항체를 측정하는 검사입니다. 특히 감염의 후유증인 류마티스열, 사구체 신염의 진단에 유용하고 감염 후 4-6주간 간격으로 검사한 결과 2배 이상의 상승이 인정되면 진단할 수 있으며 빠른 진단과 치료를 위해 이 검사가 필요합니다.

급성편도선염, 인후두염은 소아나 성인이 자주 걸리는 병으로 대개는 바이러스 감염증이고 약 10∼20%는 세균 마이코프라스마입니다. 세균 감염 중 가장 중요한 원인균이 연쇄상구균입니다. 이 세균은 몸에 염증과 화농을 초래하는 대표적인 감염증의 세균으로 현미경으로 보면 그 이름으로 알 수 있듯이 목걸이 같은 모양을 하고 있습니다.

이상치를 보이는 주요 질환 :

급성류마치스열, 급성사구체신장염, 성흥열, 급성편도선염, 만성관절류마치스

 

성홍열

A군 사슬알균 중 외독소를 생성하는 균주에 의한 상기도 감염(인후염) 발생시 인후통(통증), 발열 전신에 퍼지는 닭살 모양의 발진을 보이는 급성 감염성 질환이다. 주로 3세 이상의 소아에서 발생하게 되며 발열 및 인후염이 있는 환아에서 신체 검진상 전형적인 발진과 함께 딸기 모양의 모양이 있을 시에 임상적으로 진단을 할 수 있다.


류마티스열

A용혈성 연쇄상 구균 감염1~3주에 발생하는 경우가 많은 결합조직염증을 특징으로 하는 전신성 비화농성 질환으로 대부분은 관절, 심장, 신경계를 침범하는데 타장기도 침범된다. 즉 심염(심잡음, 심장확장, 심막염, 심부전), 다발성 관절염, 소무도병 등을 일으키고 환자의 혈청중에 각종 항체(ASO, ASK, AH)가 출현하고 CRP의 양성화, 혈액침전의 촉진, 백혈구증다증 등이 발생된다.

 


 


사구체신염

신장의 사구체에 범발성으로 일어나는 염증성 질환. 급성 사구체신염은 주로 연쇄상구균감염증에 연속해서 발생하며, 항원항체반응에 의하여 발생하는 비만성의 신장질환이다. 상기도감염의 1~2주 후에 혈뇨, 부종, 고혈압 등을 동반하며 발병한다.

 

검사로 알 수 있는 것


용혈성연쇄상구균은 적혈구를 파괴하는(용혈시키는) 스트렙토라이신이라고 부르는 독소를 냅니다. 이 독소는 산소에 의해 불활성화되기 쉽기 때문에 "스트렙토라이신-0"라고 부릅니다. 용혈성연쇄상구균에 감염되면 체내에서는 그것에 대한 방어반응으로 항스트렙토라이신-0 항체라고 하는 항체가 생긴다. 그러므로 환자의 혈청에 용혈성연쇄상구균과 적혈구를 가해서 혈청 중의 항체값을 측정하여 용혈성연쇄상구균 감염 여부를 조사합니다.

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A군 사슬알균 (Group A streptococcus, 연쇄구균)은 가장 흔한 인두염 원인균이다. 감염 된 2-3주 후에 나타나는 합병증으로 '급성 류마티스열'과 '사슬알균 감염후 토리콩팥염' (poststreptococcal glomerulo-nephritis, 연쇄구균감염후 사구체신염)이 가장 유명하다. 

그렇다면 이런 질병을 진단하고 모니터링에 활용되는 ASO (anti-streptococcus O) 검사는 언제 해야하고 해석은 어떻게 해야 하는가?


  • ASO 란 무엇인가?

사슬 알균은 Streptolysin O 라는 물질을 분비한다. Streptolysin O가 체내에 생기면 인체는 B 세포에서 이에 대항하는 antistreptolysin O (ASO) 라는 항체를 만들어 낸다. 이 항체는 균주 억제역활을 하지는 않는다.

이 항체는 사슬알균 감염 후 1주 내에 증가하기 시작하여 3-6주후 최고치에 이른 후 점차 떨어진다. 그러나 많은 수의 소아에서는 12개월 동안 높은 수치를 유지하기에 검사 결과 해석에 유의하여야 한다.

이런 변화는 다른 항원이 인체내에 침입했을 때 경과와 유사하다. 이런 ASO를 1932년 처음 측정되었다.


  • ASO의 정상치는 얼마인가?

모든 소아에서 일괄적으로 적용할 수 있는 수치는 없다. 두가지 방식으로 정상 범위를 제시하는데 한 방법은 80 백분위수, 다른 한 방법은 평균에서 2 표준편차 이상 벗어난 경우이다. 

80 백분위수를 사용하는 이유는 급성 신 부전증이나 사슬알균 감염후 토리콩팥염에 감염된 환자 80-90%가 정상 대조군보다 80 백분위수에 벗어나 있다. 이를 정상상한치로 한다.

국내 연구자를 포함하여 많은 연구자들이 정상 수치를 제시하였다. 나이에 따라 수치가 달라질 수 있다.


국내 연구자 결과는 다음과 같다.(80 백분위수 값)

이지헌 등, 2007김선주, 1997차성호, 등 1995
신생아122초등생, 진주4330-5세52
0-3세406-8세431
4-6세113김선주 등, 19949-11세572
7-9세489초등생, 충남49912-14세368
10-19세433초등생, 서울32615-17세263
20-29세122

이 정상 수치로 보아서 200 - 400 IU/mL 를 정상 범주로 잡고서 임상 증상과 같이 해석을 해야 할 것이다.

검사를 두번 하여 초기 감염 때와 합병증이 나타날 때 쯤인 10-14일 후 검사 수치가 4배 이상 증가하면 진단이 가능하다.



  • 급성 인두염 환자에서 ASO 검사가 유용한가?

급성 인두염은 배양검사 또는 급속 항원 검사로 사슬알균을 진단해야 한다. 그러나 이 두 검사는 실제 감염과 보균자(대략 10% 정도)를 감별하지는 못한다.

그렇다고 하더라도 ASO 수치가 사슬 알균에 감염 후 상승하는 것에 시간 간격이 있는 것을 고려 한다면 급성 인두염에서 ASO는 진단으로 권고하고 있지 않다.

향후 사슬 알균의 합병증이 의심되는 소견을 보였을 때 참조치로서 유용할 수는 있다.



  • 사슬 알균의 비 화농성 합병증에는 무엇이 있는가? 

사슬 알균 감염 후 몇주 이내에 균주와의 자가 면역 반응에 의해 발생할 수 있는 비 화농성 합병증은 다음과 같다.

1. 급성 류마티스 열 (acute rheumatic fever)
2. 류마티스 심장병 (rheumatic heart disease)
3. 사슬알균감염후 토리콩팥염 (poststreptococcal glomerulonephritis, APSGN, 연쇄구균감염후 사구체 신염)
4. 사슬알균감염후 반응성관절염 (poststrpetococcal reactive arthritis)
5. 사슬알균연관 소아자가면역 신경정신 질환 (pediatric autoimmune neuropsychiatric disorder associated with streptococcal infection, PANDAS)
6. 사슬알균감염후 포도막염 (poststreptococcal uveitis)
7. 사슬알균감염후 피부혈관염 (poststreptococcal cutaneous vasculitis)




  • 비 화농성 합병증을 진단하는데 ASO 검사는 유용한가?

유용하다.

사슬알균 감염 후 합병증간에 시간 간격이 있고, 감염 균주가 바이러스 일 수도 있으며, 보호자 기억력이 명확하지 않을 때가 많고, 무증상으로 지나갈 수도 있기에 과거 감염 여부를 확인할 수 있는 객관적인 자료는 혈청 검사밖에 없다.

급성 류마티스열 진단에 활용하는 진단 기준에 ASO가 포함되었지만 20% 환자에서는 음성 반응을 보일 수 있기에 류마티스열이 의심되는 환자에서는 반복 검사를 해야 한다.

또는 이를 확인할 수 있는 anti-DNase B 검사를 같이 하면 진단율이 높아진다. 이는 사슬알균감염후 토리콩팥염에서도 유사한 민감도와 특이도를 보인다.

그러므로 이런 환자들에서는 ASO와 anti-DNase B 검사를 시행해야 한다.




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   Anti-Streptolysin O (ASO)

 

 

 

 

 1. 검사명 :  Anti-Streptolysin O (ASO)   ( 8CN 464 N )

 

2. 검사의의 : group A β-hemolytic streptococcus에 의한 최근 감염지표

 

3. 검사원리 : Immunoturbidimetric assay

              면역비탁법을 이용한 원리로 ASO는 시약내 특이 항체와 침전물을 형성한다.

 

4. 검사 장비 : INTEGRA 800

   (INTEGRA 800 작동법 및 분석 parameter 참조)

 

5. 검체 준비

   1) 검    체 : 혈청(공복시)

   2) 채취용기 : Plain tube

   3) 원심방법 : 2500∼3000 rpm,  15∼20min

 

6. 검체의 적정도

   1) 검체의 양 : 200㎕이상

   2) 보관 방법 : 4∼8℃에서 2일, 장기간 보관시 검체를 냉동보관하는 것이 바람직함.(-20℃ 6개월)

   3) 방해물질 : ① Triglyceride 900mg/dl 까지 영향을 받지 않음

                 ② hemolysis, icterus, rheumatoid fsactors 영향을 받지않음

 

7. 시약 및 제조원

    1) 제조회사 : Roche

       공 급 처 : 선경 메디칼(주)

    2) 시약의 조성 :

       R1 : Glycine buffer with bovine serum albumin stabilized with

            0.09% sodium azide in vial C (liquid)

       R2 : Latex particles coated with streptolysin O antigens in glycine buffer

            with bovine serum albumin, stabilized with 0.09% sodium azide in vial B (liquid)

       NaCl Diluent 9%

    3) 조    제 : 그대로 사용

    4) 보    관 : 냉장보관 (8℃), 12 weeks    

 

 8. 정도관리

    1) 정도관리 물질 : Roche Precinorm Protein, Precipath Protein

       ① 제조 방법 : 액상이므로 실온으로 한 후 그대로 사용한다.

       ② 보관 방법 : 2∼8℃에서 유효기간까지  

       ③ 검사전 준비 사항 : 실온으로 돌아온 후에 검사를 수행한다.

    2) 정도관리 방법

       INTEGRA 800 Q. C Program 이용.

       문제 발생시는 원인을 파악하여 해결하고 필요시 recalibration을 시행한다.

 

9. 정상 범위 :

           adults : < 200  IU / ml

           children : < 150 IU / ml

   측정한계 :  0 - 800 mg/dl

   자동희석한 검체 : 0 - 8000 mg/dl

 

 

10. 결과 해석

   1) 증가하는경우

       Streptococcal infection, acute rheumatic fever, acute glomerular nephritis

   2) ASO가의 비특이적인 증가

      ① Bacteria 오염시(Bacillus subtilis or Pneudomonas등의 세균으로 검체의 오염이 심할 때)

      ② 혈청 지질이상(혈중 Cholesterol이 증가될 때)

      ③ 다발성골수종 등의 monoclonal immunoglobulin 혈증이 있는 경우

      ④ 편도선 적출후

11. 기타

 * 유의사항

  1) Liver disease나 검체가 bacterial contamination된 경우에 false positive 결과를 얻을 수 있다.  

  2) 소아의 연쇄구균에 의한 피부감염시는 ASO 역가가 별로 증가하지 않을 수 있으므로  연쇄구균의        다른 항원에 대한 항체 검사를 2가지 이상 같이 실시하는 것이 진단의 정확성을 증가시킬 수 있다.

  3) 높은 ASO 검사결과를 단일 진단 지표로 이용치 말고, 다른 임상증상이나 1, 2주 간격으로 검사를        실시하는 것이 진단의 정확성을 증가시킬 수 있다.

* Streptolysin O는 group A β-hemolytic streptococci에 의해 생성되는 여러 가지 toxic immunogenic       exoenzymes 중의 하나이다. ASO의 증가는 group Aβ-hemolytic streptococcus에 의한 최근 감염을 시사하나 감염 후 7-10일 까지는 항체가 나타나지 않는다. 따라서 급성 연쇄구균감염진단시에는 별로 유용하지 않고, 대신 급성 류마티스열이나 급성사구체신염의 진단에 사용하나 급성사구체신염의 20%에서는 정상범위를 보일 수 있다.  


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Agarose gel은 전기영동에 쓰이는 것으로 DNA가 이동하는 매질의 역할을 한다.


DNA를 고정하는 능력이 우수하여 DNA를 분자량에 따라 분리해내기가 용이하다.

 

제조 준비

 

① 1 × TAE Buffer, Ethidium, Agarose

② 전자레인지, 방열장갑, 수평계

 

제조 과정

1. 제조과정에 쓰일 물품들을 3차 증류수로 깨끗이 씻어준 후 닦는다.

2. Buffer를 비커에 넣고 Buffer 무게의 1/100에 해당하는 Agarose를 비커에 넣는다.

→ 이 때 Gel에 들어가는 성분들의 비율은 다음과 같다.

1 × TAE buffer

Ethidiun Bromide

Agarose

100㎖

4㎕

1g

50㎖

2㎕

0.50g

25㎖

1㎕

0.25g

 3. 2의 삼각플라스크를 전자레인지에서 가열한다. 5초 혹은 10초 간격으로(비커 안의 내용물이 끓어 넘치지 않을 정도의 시간) 삼각플라스크를 꺼내서 플라스크를 바닥에 닿게 하여 천천히 돌려주면서 식힌다. 살짝 식으면 다시 집어넣고 내용물이 투명 해 질 때까지 반복한다.

4. 3의 과정이 끝난 플라스크에 Etidium Bromide의 정량을 집어 넣는다. 

5. Gel 주형틀의 수평을 맞추고 Gel을 붙는다. 

6. Kimps등의 실험용 휴지로 위를 덮어서 먼지가 내려앉지 않게 한다.



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혈액 ,수혈 실습 계획서.pptx


14 남서 혈액 수혈 실습 계획서



수혈의학 실습 보고서

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ABO, Rh 혈액형 검사 (혈구형 / 혈청형)

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실험 목적 : 혈액의 ABO항원과 Rh항원의 유무 판별.

준비물 : EDTA tube, 채혈도구, Anti A,B,D(Rh) 시약, 원심분리기, 혈청분리관, 피펫, 1.5ml tube, 15ml tube

총 사용 혈액 : 실험자 혈액 EDTA 1AEDTA 1, BEDTA 1.


실험 방법1 (혈구형)

실험자 혈액(EDTA)샘플을 2,500rpm5분간 원심시킨다.

혈청 분리관으로 혈장을 옮겨놓고(혈청형 검사때 사용), Buffy coat층을 제거한다.

생리식염수로 3회 세척한다.

세척 적혈구를 이용하여 50% 혈구 부유액을 제조한다.

혈액형 검사 Plate에 제작한 50%혈구 부유액을 각각 200ul씩 떨어뜨리고 혈구형 검사 시약 3가지를 동량 넣는다. (pipet 이용)

Applicator로 시약과 혈액을 섞어서 결과를 관찰한다.

 

실험 결과


Front Typing

Anti-A

Anti-B

Anti-D

4+

-

2+

 

 실험 방법2 (혈청형 Plate)

혈구형 검사 실험과정 1~3번처럼 A,B형 세척 혈구를 만든다.

세척혈구로 A,B 5% 혈구 부유액을 제작한다. (세척혈구 500ul + 9.5ml Saline)

혈구형 검사 실험과정 2번에서 얻은 실험자 혈장을 Plate100ul2곳에 떨어뜨린다.

각각의 혈장에 5% A,B 혈구 부유액 100ul를 넣어준다.

어느정도 반응시간 (30s~1min)을 주고 applicator로 섞어준 뒤 결과를 관찰한다.

실험 결과


Back typing

A cell

B cell

-

2+

 

 실험 방법3 (혈청형 Tube)

시험관 두 개에 각각 AB로 표시한다.

A 시험관에는 A cell, B 시험관에는 B cell 5%부유액을 혈청 분리관으로 한방울 넣는다.

3. 실험자 혈장을 2방울 넣는다.

4. 시험관을 잘 혼합한 후 3,400rpm15초간 원심분리한다.

5. 상층부에 용혈 유무 확인 후 시험관을 기울려 응집 유무를 관찰한다 (살짝 흔들어 본다)

살짝 흔드는 이유는 원심분리하면 응집되지 않는 샘플도 가라앉아 응집된것처럼 보이기 때문이다.

 

실험 결과

Back typing

A cell

B cell

-

4+

 

 

Front Typing

Back typing

Anti-A

Anti-B

Anti-D

A cell

B cell

4+

-

2+

-

4+

최종 결과 판독

ABO판정 : A

Rh판정 : Rh+


최종 결과 토의

-D항원(Rh)검사에서는 ABO보다 역가가 낮아서 응집력이 Anti-A에서보다는 낮았다.

-혈청형 검사는 Plate법보다 시험관법이 더 결과관찰이 용이했다.

 

아형 검사

 

실험 목적 : 인위적으로 만든 아형이 혈액형 검사에서 어떤 성상을 나타내는지 본다.

준비물 : EDTA tube, 채혈도구, Anti A,B,D 시약, 원심분리기, 혈청분리관, 피펫, 1.5ml tube, 15ml tube, 12ml 시험관,

총 사용 혈액 : 실험자 혈액EDTA 2 (A Rh+)

 

실험 방법1 (혈구아형 제작)

채혈한 혈액을 2,500rpm5분간 원심분리하고 혈장을 옮긴다.

Buffy coat층을 제거하고 Saline으로 3회 세척한다.

세척한 혈구를 1.5ml tube200ul 옮긴다.

Saline200ul 첨가하여 혈구을 희석한뒤 마찬가지로 계대 희석으로 x2,4,8,16,32 희석한 혈구를 만든다.

 

실험 방법2 (혈장아형 제작)

원심분리하여 얻은 혈장을 깨끗한 l.5ml tube200ul를 분주한다.

Saline으로 계대희석하여 2~32배 희석혈장을 제작한다.

 

실험 방법3 (아형 혈구형 검사)

제작한 아형 혈구 샘플로 50% 혈구 부유액을 제조한다.

혈액형 검사 Plate에 제작한 50%혈구 부유액들을 각각 100ul씩 떨어뜨리고 혈구형 검사 시약 3가지를 동량 넣는다. (pipet 이용)

Applicator로 섞어준 뒤 결과를 확인한다.

 

No

(희석배수)

Anti-A

Anti-B

Anti-D

1(원액)

4+

-

3+

2(x2)

3+

-

2+

3(x4)

2+

-

1+

4(x8)

1+

-

1+

5(x16)

1+

-

-

6(x32)

-

-

-

실험 결과

 결과 토의

희석한 배율이 커질수록 응집력이 작아졌다.

D항원(Rh)의 역가가 ABO보다 낮기 때문에 응집력에서 차이가 있다.

이 결과를 토대로 항원수가 부족한 A형 아형(A1,A2,A3...)Weak D같은 아형을 생각 할 수 있다.

 

실험 방법4 (아형 혈청형 검사)

제조한 아형 혈장 샘플당 2개의 시험관을 준비한후 각각 A,B를 표시한다.

각 시험관에 아형혈장을 종류별로 200ul넣어주고 A,B 5% 혈구 부유액을 100uL씩 넣어준다.

조심스럽게 혼합한 후 3,400rpm에서 15초간 원심분리한다.

원심분리 후 용혈 유무 확인 후 시험관을 살짝 흔들어준 후 기울려 응집 유무를 관찰한다.

 

실험 결과

 

No(희석배수)

A cell

B cell

1(원액)

-

4+

2(x2)

-

4+

3(x4)

-

3+

4(x8)

-

2+

5(x16)

-

1+

6(x32)

-

-

결과 토의

A형 혈액의 혈장을 사용하여 A cell에서는 응집을 관찰 할 수 없다.

희석 배수에 따라 응집력이 낮아졌다. (단 원액과 2배희석 혈장의 응집 여부는 크게 차이가 없었다)

혈장이 희석될수록 항체수가 줄어든다는 것을 알 수 있다.

 

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8. RBC count : Anemaia, leukemia 진단

0.85% NaCl, Hayem's Sol. Gawor's Sol. Dacie's Sol. Strong's Sol. Toison's Sol.

Hayem's solution : Sod. sulfate(Na2SO4), Sod. chloride(NaCl), Mercuric chloride(HgCl2), D.W

Gower's solution : Sod. sulfate, Glacial acetic acid, D.W

희석 pipette0.5눈금까지 혈액 흡입하고 101까지 희석액을 흡입 200:1 희석

cf> 빈혈이 심할 경우 100 : 1로 희석한다.

계산 : R × 25/5 × 10 × 200 = R × 10000 = 1mm3

* 계산 후 20개 이상 차이시 다시 조작.(×400검경)

정상치 : 남자 450~500만개/mm3, 여자 400~450만개/mm3

 

9. WBC count : 적혈구를 용혈시켜야 한다.

2% acetic acid, 1% Hydrochloric acid(0.1N HCl)

Turk's solution : Glacial acetic acid(적혈구 파괴 시약), Gentian violet CWB(염색), D.W(희석효과)

희석 파이펫에 0.5눈금까지 혈액 흡입. 11까지 희석액 흡입 (20:1 희석)

계산 : W × 10 × 20 × 1/4 = W × 50 = 1mm3()

* 계산 후 12개 이상 차이시 다시 조작(×100검경)

정상치 : 성인 4000~10000/mm3, 어린이 9000~40000/mm3

cf> 희석 pipette - 혈구 희석 또는 일정량(20)의 혈액채취를 목적으로 만들어진 pipette

파이펫 세척 방법 : D.W Alcohol Ether(Acetone)

유핵 적혈구에 대한 보정

100

Corrected WBCs = uncorrected WBCs × ---------------------------

100WBCs + nRBCs

 

http://m.cafe.daum.net/laboratoryseouhealth/Tk3L/15?listURI=%2Flaboratoryseouhealth%2F_rec%3FboardType%3DM

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